logo
На главную страницу

Медицинский гомеопатический центр

"ФИЛИКС"

(г. Москва)




Wer heilt, hat recht - Прав тот, кто излечивает.
(С.Ганеман)
Версия для печати


Простой способ выявления в биологических материалах хламидий, микоплазм (уреаплазм), трихомонад, гонококков, грибов и мн. др.

( Патент РФ № 2281472 )


Важно!

Настоящий материал является интеллектуальной собственностью автора. Его полная или фрагментарная публикация без согласия автора не допускается. Приведенный в материале способ диагностики защищен патентом РФ и не может быть использован в коммерческих целях без письменного согласия патентодержателя. Автор не возражает против частного (не коммерческого), а также научного использования публикуемых материалов, при условии соблюдения пользователями этических норм, принятых в науке и обществе. Автор не несет ответственности за возможные диагностические ошибки и расхождения результатов, полученных приводимым и каким-либо иным методом диагностики, и напоминает, что ни один диагностический метод не обладает абсолютной достоверностью. В случае первичного или вторичного использовании настоящих материалов в публикациях, просьба размещать в них ссылку на первоисточник (http://www.filix.ru/index.php?page=patent). Спасибо за понимание!


Предварительные замечания

Предлагаемый метод активно используется нами для целей диагностики с 1998 года. За это время он великолепно зарекомендовал себя как простой, универсальный, быстрый, дешёвый и надежный. Метод пригоден для скрининговой, первичной, мониторинговой и даже контрольной диагностики. Он может быть легко реализован в практически любом медучреждении и даже в домашних условиях. Для практической реализации метода не требуется ничего, кроме обычного микроскопа лабораторного (или даже учебного) класса, укомплектованного масляноиммерсионным объективом с увеличением 90-100x и окуляром 7-10x, а также небольшого количества реактивов и вспомогательных материалов. Публикация подготовлена по материалам заявки на изобретение и содержит избыточное количество вариаций метода. Для практических целей вполне достаточно фиксации материала 95%-спиртом и использования приблизительно 0.5% растворов красителей на водопроводной воде. Следует избегать смешивания красителей между собой, т.к. в результате их взаимодействия образуется малорастворимый аддукт, осаждающий их из раствора, а кроме того, несколько ухудшающий качество окраски. Следует также избегать попадания в растворы красителей посторонних веществ и спирта: зафиксированные спиртом мазки должны быть тщательно высушены (полезно также перед погружением в первый раствор сполоснуть стекло чистой водой). Не рекомендуется использование нефиксированных мазков ввиду возможного смыва части материала и быстрого загрязнения рабочих растворов. Методы отбора мазков подробно описаны здесь. В некоторых случаях, когда цитопаразитарные инфекции образуют массивные глубокие очаги (например, при аденоме простаты) выявить возбудителя в мазке удается не всегда. Это связано с существованием у цитопаразитов т.н. "чувства кворума" - механизма самоограничения общей численности паразита в организме-хозяине. Для обнаружения возбудителя в таких случаях могут быть применены провоцирующие и рассасывающие средства (предпочтительно - гомеопатические). Однако и этих мер может оказаться не достаточно. К счастью, такие случаи относительно редки, причем, их практически всегда удается распознать по характерной симптоматике (см. также).
Временное исчезновение цитопаразитов со слизистых возможно также после употребелния антибиотиков и некоторых противовоспалительных средств, например, салицилатов. Этот период может иметь протяженность от ненскольких дней до нескольких месяцев - в зависимости от дозы яда и скорости его выведения из организма. При длительном употребелнии подобых лекарственных средств также может наблюдаться уход инфекции с периферии с формированием (укрупнением) глубоких очагов.
Описываемый ниже метод диагностики был изучен в различных модификациях, при которых варьировались методы фиксации материала, концентрации красителей, растворители для красителей, продолжительность прокрашивания, pH растворов, методы просушки готовых мазков и некоторые другие параметры. Во всех случаях в пределах заявленных диапазонов результаты оказывались сопоставимыми, и редко можно было отдать предпочтение какой-либо из модификаций. Ниже приводятся примеры применимости метода, снабженные микрофотографиями в качестве иллюстраций. Конкретные прописи приведены только для препаратов крови, а также хламидий и микоплазм, т.к. метод особенно интересен для диагностики именно этих труднодиагностируемых патогенов. Однако те же самые методики могут быть использованы и для других приведенных здесь объектов, окраска которых производилась методом, описанным в примере Chl.1.
Автор готов ответить на любые вопросы, касающиеся применимости этого метода. И будет признателен его пользователям, которые предоставят ему результаты своих наблюдений.

Обозначения красителей, используемые в тексте:
БЖ – бриллиантовый желтый – динатриевая соль 4,4’-бис-(4-оксифенилазо)-стильбен-2,2’-дисульфоновой кислоты.
МС – метиленовый синий – 3,7-бис-диметиламинофеназатионийхлорид.

Форменные элементы тканей

Метод позволяет осуществлять дифференциальную окраску многих тканей растительного и животного происхождения. При этом, ядерный хроматин клеток окрашиваются в насыщенные тона от розового до темно-коричневого, а мембраны, в зависимости от вида клеток и их целостности, окрашены в светлые оттенки синего, розового, желтого, зеленого или серого тонов, но при этом контуры клеток получаются отчетливыми. Кроме этих элементов, иногда могут быть обнаружены ядрышки, глыбки хроматина и элементы цитоплазматической структуры. Хорошо прокрашиваются соматические клетки, форменные элементы крови, сперматозоиды, апоптотические фрагменты.

Форменные элементы крови

Метод позволяет распознавать по структуре, оттенкам и характеру зернистости форменные элементы крови, поэтому после дополнительных исследований и оптимизации, может служить дополнением или заменой существующим методам общего анализа крови.

Пример Sng.1
На предметном стекле делают тонкий мазок из свежезабранной крови, подсушивают на воздухе до полного высыхания и фиксируют погружением в метанол в течение 1-3 минут (допускается передержка). Извлекают из фиксатора и дают мазку подсохнуть на воздухе.
Погружают мазок в 0.1% р-р БЖ в водопроводной воде, выдерживают около минуты (допускается передержка). Извлекают. Дают красителю стечь. Осторожно промывают водопроводной водой до прекращения окрашивания стекающих капель.
На поверхность мазка наслаивают р-р МС, полученный смешением 3 об. ч. насыщенного этанольного р-ра МС и 10 об. ч. 0.01% водного р-ра гидроксида калия (т.н. «щелочная синька Леффлера»), слегка покачивая стекло, выдерживают 1-3 минуты до равномерного окрашивания, контролируемого визуально. Декантируют раствор и промывают мазок водопроводной водой до прекращения стекания окрашенных капель.
Оставляют высыхать при комнатной температуре или подсушивают феном в токе слегка подогретого воздуха.
Для исследования форменных элементов микроскопируют под масляной иммерсией при общем увеличении микроскопа 900-1200x. При правильной окраске эритроциты приобретают красновато-коричневый цвет, а клетки белой крови окрашиваются гетерохромно:

Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
     
Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
     
Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
     

Пример Sng.2
На предметном стекле делают тонкий мазок из свежезабранной крови, подсушивают на воздухе до полного высыхания и фиксируют поливом этанола в течение 1-3 минут (допускается передержка). Дают фиксатору стечь и полностью испариться с поверхности.
Погружают мазок в 0.1% р-р БЖ в дистиллированной воде, выдерживают около минуты (допускается передержка). Извлекают. Дают красителю стечь. Осторожно промывают дистиллированной водой до прекращения окрашивания стекающих капель.
Погружают мазок в 1% р-р МС в дистиллированной воде, выдерживают около минуты (допускается передержка). Извлекают. Дают красителю стечь. Осторожно промывают дистиллированной водой до прекращения окрашивания стекающих капель.
Оставляют высыхать при комнатной температуре или подсушивают феном в токе слегка подогретого воздуха.
Для исследования форменных элементов микроскопируют под масляной иммерсией при общем увеличении микроскопа 900-1200x. При правильной окраске мазка, фиксированного в этаноле, эритроциты приобретают зеленый цвет, оттенок которого может варьировать в зависимости от деталей прокраски, свежести крови и, возможно, наличия/отсутствия в ней консервантов:

Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
     
Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Blood corpuscles; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
     

Другие форменные элементы

Красители легко и быстро проникают сквозь клеточные мембраны, но при этом прочно фиксируются и на некоторых компонентах самих мембран, создавая тем самым мелкомозаичный контур клетки. Причем, мембраны клеток, сохранявших целостность на момент отбора мазка (а также поврежденных только в момент его обработки), имеют светло-серую или серовато-голубую окраску, в отличие от мембран клеток, подвергшихся апоптозу (естественному «запрограммированному» саморазрушению), которые окрашены в яркие желтые или зеленые тона, как проиллюстрировано ниже. Встречаются также более интенсивно окрашенные клетки, по-видимому, несущие на своей поверхности иммунные комплексы и/или очень мелкую микрофлору.
Кроме соматических клеток, метод позволяет также окрашивать сперматозоиды, и может быть применен для определения их концентрации и морфологии при исследовании спермы, а также для выявления сперматореи и примесей спермы в исследуемом материале.

Epiteliocyt; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Apoptosis; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Cancer cells; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Spermatozoid; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru

Клетка переходного
эпителия.

Апоптозированные клетки
плоского эпителия.

Атипичные клетки
в респираторном
тракте при раке.

Нормальный
сперматозоид.

Хламидии

Хламидии – род мелких патогенных бактерий, включающий в себя несколько видов. Особенностью жизненного цикла всех видов хламидий является размножение внутри эпителиальных клеток хозяина с образованием т.н. телец включения (ТВ) – особых вакуолей, внутри которых происходит процесс бинарного деления с образованием новых бактериальных клеток. Каждое ТВ может содержать от десятков до сотен бактерий, которые после созревания покидают инфицированную клетку, заражают другие клетки организма и дают начало новым ТВ. В зависимости от вида, штамма и других факторов, каждая инфицированная эпителиальная клетка может содержать от одного до нескольких десятков ТВ, которые либо ассоциированы с ядром (как у «классических» штаммов Chl.trachomatis), либо диффузно расположены в цитоплазме (Chl.pneumoniae, Chl.psittaci). Как правило, ТВ, отличаются от ядер инфицированных клеток размерами (ядра обычно крупнее) и окраской (последняя вариабельная). Диагностика C.pneumoniae и других видов с диффузно расположенными ТВ никаких сложностей не представляет. Диагностика C.trachomatis может потребовать определенных навыков и внимательности в случаях, когда ТВ слишком плотно прилегает к ядру клетки или мало отличается от него по окраске, как в иллюстрации к примеру Chl.1, где один из эпителиоцитов содержит такое включение. В таких случаях следует особое внимание уделять форме ядер, которая в норме должна быть округлой – без сильной вытянутости и выпячиваний. При наличии большого количества «деформированных» подобным образом ядер, следует заподозрить инфицирование материала C.trfchomatis. Однако на практике такие затруднения встречаются редко.

Известные методы обнаружения хламидий микроскопией окрашенного мазка (например, метод Романовского-Гимзы) отличаются значительной продолжительностью и трудоемкостью, использованием ядовитых компонентов (азур, метанол) и нестабильностью качества окраски. Существующие методы, основанные на иммунофлуоресцентых (ПИФ) и генных методах (ПЦР) отличаются узкой специфичностью к видам, подвидам или сероварам хламидий и применяются, в основном, для выявления типичных форм Chl.trachomatis. Для Chl.pneumoniae и Chl.psittaci, а также нетипичных форм Chl.trachomatis удовлетворительных методов такого рода диагностики не разработано.
Настоящий способ позволяет уверенно обнаруживать ТВ (единичные хламидии неотличимы от другой кокковой флоры) в клетках хозяина независимо от видовой принадлежности хламидий (на микроснимках ТВ любых видов хламидий отмечены как «ТВ Chl.sp.»). Следует отметить, что, в отличие от существующих методов, основанных на выявлении единичных бактерий (элементарных телец), предполагающих травматическую процедуру взятия соскоба со слизистой, заявленный метод позволяет с успехом использовать для отбора материала простой мазок.

Пример Chl.1Chlamydia; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Мазок, взятый ватным аппликатором из дистальной части уретры женщины, легкими точечными прикосновениями наносят на предметное стекло, подсушивают на воздухе, погружают для фиксации в кювету с 95% этанолом, извлекают через несколько секунд и дают этанолу испариться на воздухе.
Сухой зафиксированный мазок погружают в 0.5% р-р БЖ в водопроводной воде до равномерного желтого окрашивания, контролируемого визуально (здесь и в других примерах: обычно – 1-2 минуты, допускается сколь угодно длительная передержка). Извлекают. Дают красителю стечь. Промывают проточной водой до прекращения окрашивания стекающих капель.
Погружают без подсушивания (подсушивание допускается) в 0.5% раствор МС в водопроводной воде и выдерживают в нем до равномерного интенсивного окрашивания, контролируемого визуально (здесь и в других примерах: обычно – 2-4 минуты, допускается сколь угодно длительная передержка). Промывают проточной водой до прекращения стекания окрашенных капель. Высушивают на воздухе.
Микроскопируют с масляной иммерсией при общем увеличении микроскопа 900-1200x (допускается меньшее увеличение и отсутствие иммерсии, однако это может затруднить работу).
ТВ хламидий выявляются внутри эпителиальных клеток в виде одиночных или множественных включений округлой или продолговатой формы, прилегающих к ядру или диффузно расположенных в цитоплазме, обычно имеющих отличную от ядра окраску и меньшие размеры.

Пример Chl.2Chlamydia; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Мазок, взятый ватным аппликатором из дистальной части уретры женщины, легкими точечными прикосновениями наносят на предметное стекло, подсушивают до полного высыхания и фиксируют нагреванием на электроплитке с закрытой спиралью и регулируемой мощностью, нагретой до температуры 110°С в течение 5-10 минут. Дают охладиться.
Погружают в 1% р-р БЖ в дистиллированной воде, выдерживают до равномерного желтого окрашивания, контролируемого визуально. Извлекают. Дают красителю стечь. Промывают дистиллированной водой до прекращения окрашивания стекающих капель.
Погружают без подсушивания в 1% р-р МС в дистиллированной воде и выдерживают в нем до равномерного интенсивного окрашивания, контролируемого визуально (допускается передержка). Промывают дистиллированной водой до прекращения стекания окрашенных капель. Высушивают нагреванием на микроплитке. Подщелачивают для улучшения цветового контраста обработкой в течение нескольких секунд парами аммиака.
Микроскопируют под масляной иммерсией при общем увеличении микроскопа 900-1200x.
Данная модификация не приводит к существенным различиям в микроморфологической картине мазка в сравнении с модификацией, описанной в примере Chl.1, но несколько изменяет оттенки и интенсивность окраски некоторых форменных элементов.

Пример Chl.3Chlamydia; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Мазок, взятый ватным аппликатором из влагалища, легкими точечными прикосновениями наносят на предметное стекло, подсушивают до полного высыхания и фиксируют сухим ацетоном в течение 1 минуты (допускается передержка). Дают ацетону испариться.
Смешивают в равных объемах 1% р-р БЖ в дистиллированной воде и 4% р-р хлористоводородной кислоты. Краситель почти полностью выпадает из раствора в виде темного осадка. Тем не менее, мазок погружают в полученную смесь и выдерживают в ней 3 минуты. Извлекают. Дают красителю стечь. Промывают водопроводной водой до прекращения окрашивания стекающих капель.
Погружают без подсушивания в 1% р-р МС в водопроводной воде и выдерживают в нем до равномерного интенсивного окрашивания, контролируемого визуально (допускается передержка). Промывают водопроводной водой до прекращения стекания окрашенных капель. Высушивают нагреванием на микроплитке.
Микроскопируют под масляной иммерсией при общем увеличении микроскопа 900-1200x.
Данная модификация не приводит к существенным различиям в микроморфологической картине мазка в сравнении с модификациями, описанными в примерах Chl.1-2.

Пример Chl.4Chlamydia; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Мазок, взятый посредством прямой аппликации с губок уретры мужчины, завершившего курс лечения от хламидиоза, подсушивают (если требуется) до полного высыхания и фиксируют метанолом в течение 1 минуты (допускается передержка). Извлекают. Дают метанолу испариться с поверхности.
Погружают в насыщенный р-р БЖ в водопроводной воде до равномерного желтого окрашивания, контролируемого визуально (допускается передержка). Извлекают. Дают красителю стечь. Промывают водопроводной водой до прекращения окрашивания стекающих капель.
Погружают без подсушивания в насыщенный р-р МС, и выдерживают в нем до равномерного интенсивного окрашивания, контролируемого визуально. Промывают водопроводной водой до прекращения стекания окрашенных капель. Высушивают феном в токе горячего (90°C) воздуха.
Микроскопируют под масляной иммерсией при общем увеличении микроскопа 900-1200x. Следы погибших телец включения в эпителиальных клетках обнаруживают в виде темных пятен с неровными краями.
Данная модификация не приводит к существенным различиям в микроморфологической картине мазка в сравнении с модификациями, описанными в примерах Chl.1-3.

Микоплазмы

Микоплазмы – семейство мелких патогенных бактерий, включающее в себя не менее 14 родов и множество видов. Некоторые из них являются паразитами клеточных мембран и патогенны для человека. Микоплазмы прочно удерживаются на клеточных мембранах инфицированных клеток, а размножаясь, или распространяются по их поверхности, часто переползая и на мембраны соседних клеток, или отпочковываются в межклеточную жидкость и разносятся вместе с ней. Для питания и размножения они используют вещества, содержащиеся в межклеточном пространстве и входящие в состав клеток, нарушая трофику тканей и межклеточные коммуникации. По внешнему виду колоний и характеру их распространения они очень напоминают грибы, что и отражено в названии семейства. Молодые клетки в основном округлые, содержат много нейтральных липидов и практически не окрашиваются красителями (кроме липофильных). Старые клетки могут быть сильно вытянуты, часто имеют не отпочковавшиеся ответвления дочерних клеток, образуют сетеподобные сплетения на поверхности клеток хозяина и более восприимчивые к окрашиванию. Свободные клетки бактерий очень мелки, полиморфны и обычными методами неотличимы от банальной микрофлоры.
Удобных и при этом надежных методов обнаружения микоплазм в биологическом материале не разработано (наилучшие результаты – выявляемость ок. 60% - дают методы с применением посева на специальные питательные среды, разработанные для Ureaplasma urealyticum и Mycolasma hominis). Для большинства видов микоплазм какие-либо методы диагностики вообще отсутствуют.
При окрашивании таким способом, старые клетки образуют на слабоокрашенной мембране хорошо различимую тонкую сеть тонких темных (возможно, вследствие осаждения на них антител) нитей (филаментная форма), а молодые – сферические неокрашенные везикулы (везикулярная форма), которые контрастированы филаментной сетью, образованной старыми клетками, собственной окраской мембраны и прочими окрашенными объектами на её поверхности.
Настоящий способ позволяет уверенно обнаруживать патогенные (паразитирующие на клеточных мембранах) микоплазмы в биологическом материале, но за редким исключением не позволяет установить их видовую принадлежность (замечено, что уреаплазмы образуют более мелкие и более однородные по размерам везикулярные формы и более интенсивно окрашенные филаментные). Однако по причине сходства патогенезов и методов лечения такая индивидуализация имеет второстепенное значение.

Пример Myc.1Ureaplasma; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Мазок, взятый посредством прямой аппликации с губок уретры мужчины, подсушивают (если нужно) на воздухе и далее поступают, как описано в примере Chl.2.
Эпителиальная клетка слева не инфицирована. Клетка справа – инфицирована уреаплазмами. На увеличенном фрагменте инфицированной эпителиальной клетки видны неокрашенные везикулы молодых уреаплазменных клеток.

 

 

 

Пример Myc.2Mycoplasma; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Мазок, взятый ватным аппликатором из влагалища, обрабатывают, как указано в примере Chl.1. Выявляют клетки с характерными везикулярными и фибриллярными включениями на мембранах (темные "тяжи", которые, по видимому, представляют собой более старые нитевидные клетки, покрытые окрашенными в темный цвет иммуннымми комплексами).

 

 

 

Пример Myc.3Mycoplasma in dog; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Отпечаток препуция молодого кобеля с признаками уретрита, подсушивают на воздухе, фиксируют поливом 95% этанола, вновь подсушивают на воздухе, погружают в 0.01% раствор БЖ и выдерживают в нем до появления видимого окрашивания (допускается передержка). Окрашенный мазок промывают водопроводной водой и погружают в 0.01% раствор МС. Мазок по какой-либо причине оставляют в растворе на ночь (допускается извлечение мазка по достижение необходимой интенсивности окрашивания (через несколько минут); процесс контролируют визуально). Утром мазок извлекают из раствора, промывают водопроводной водой, сушат феном и убеждаются в том, что передержка не отразилась на качестве прокраски посредством микроскопирования при увеличении 900x.
Эпителиальная клетка инфицирована микоплазмами и окружена лейкоцитами (для очагов хронического микоплазмоза человека лейкоцитоз не характерен).

Другие бактерии

Применяя методы, аналогичные вышеописанным, можно надежно диагностировать различных представителей патогенной и банальной микрофлоры человека, животных и других природных объектов, в том числе, инфектологически значимые, такие как диплококки (включая гонококки и менингококки), гарднереллы, бактероиды, клостридии, дифтерийную палочку, и мн. др. Бактерии, видовую принадлежность которых трудно определить визульно, обозначены символом «sp.», следующим за родовым наименованием (например, «Leptospira sp.»).

Doederlein's bacillus; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Gagdnerella; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Leptospira; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Вагинальная флора.
Палочки Дёдерляйна
(Lactobacillus sp.).
Вагинальная флора.
Гарднереллы
(Gardnerella vaginalis).
Условно патогенная микролора
пресного водоема.
Спирохеты (Leptospira sp.).
Bacillus cereus; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Bacillus sp.; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru

Clostridium perfringens (?); autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru

Стрептобациллы
(Bacillus cereus)
из зева.
Палочки неустановленной
видовой принадлежности
из культуральной среды.
Острый гастроэнтерит.
Clostridium perfringens (?)

в желудочном соке.

  Corynebacterium diphtheriae; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Neisseria gonorrhoeae; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
  Дифтерийные палочки
(Corynebacterium diphtheriae)
из зева при ОРЗ.
Гонококки
в лейкоцитах и внеклеточно
при гонорее.

Вирусы

Некоторые вирусы (в том числе, вирус герпеса и цитомегаловирус) могут быть обнаружены предлагаемым способом по характерным изменениям в ядрах и/или цитоплазме эпителиальных клеток. В небольшом количестве они выявляются даже в состоянии ремиссии. При манифестации вирусной инфекции численность зараженных клеток резко возрастает. Ниже приводятся типичные микроскопические картины мазков при вирусных инфекциях.

ARVD; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru HSV; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru CMV; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Тотальное поражение
ядер лейкоцитов при ОРВИ.
Герпесвирусная инфекция
в ядрах эпителиоцитов.
Цитомегаловирусная инфекция
в ядре эпителиоцита.

Простейшие

При любых модификациях метода простейшие прокрашиваются так же легко, как и форменные элементы тканей человека и животных:

Trichomonas; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Amoeba; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Flagellata; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Трихомонады из уретры. Амеба из аквариума. Флагеллята из аквариума.

Грибы

Многие грибы могут быть легко и полихромно прокрашены предлагаемым методом. Для целей дополнительной дифференциации грибов от иной микрофлоры, допустим предварительный щелочной гидролиз образца, к которому грибы, в отличие от большинства бактериальных и эукариотических клеток, устойчивы.

mycotic vulvovaginitis; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Penicillum; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Конидии и обрывки мицелия
грибов на фоне палочек
Дёдерляйна при «молочнице».
   
Конидии и конидиеносцы
пеницилла (Penicillum sp.)
из зеленой хлебной плесени.
autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru Microsporum canis; autor: V.Dvoryanchikov, http://www.filix.ru
Конидии и конидиеносцы гриба
неустановленного вида
из чёрной потолочной плесени.
   
Microsporum canis
с препуция ребенка
.

В.Дворянчиков. Москва, 25 марта 2006 г.
e-mail: doctor@filix.ru
© Все права защищены.

все фото